70. Kādi ir piesardzības pasākumi atlikušajai hlora noteikšanai?
Hlors ir ļoti nestabils ūdens šķīdumā, īpaši zemā koncentrācijā, un saturs strauji samazināsies. Hlora samazināšanas ātrums tiks paātrināts, ja tas tiks pakļauts saules gaismai un citai spēcīgai gaismai vai uzbudināta. Tāpēc paraugu nevar uzglabāt pēc paraugu ņemšanas, un hlora noteikšana ir jāsāk nekavējoties, vienlaikus izvairoties no gaismas iedarbības un ūdens parauga uzbudinājuma.
Visām operācijām noteikšanas procesa laikā jāizvairās no tiešas saules staru iedarbības, un to vislabāk var veikt zemākajā iespējamā temperatūrā un mīkstajā gaismā. Turklāt visām kolorimetriskajām metodēm ir vajadzīgas krāsu un duļķainības sagataves, lai kompensētu neapstrādāta ūdens krāsu un hromatiskumu, it īpaši, ja duļķainība un hromatika ir augsta, ir jānosaka tukšā vērtība.
Izmantojot O-tolidīna vizuālo kolorimetrisko metodi, lai noteiktu atlikušo hloru, ja ūdens paraugu vienmērīgi sajauc ar standarta O-tolidīna šķīdumu un pēc tam kolorimetrisko metodi tiek veikta nekavējoties, izmērītais rezultāts ir bezmaksas atlikušais hlors. Ja ūdens paraugu 10 minūtes novieto tumšā vietā, lai pirms kolorimetriskās metodes veikšanas iegūtu visaugstāko hromatiskumu, rezultāts ir kopējais atlikušais hlors. Kopējais atlikušais hlors, atskaitot brīvo atlikušo hloru, ir kombinētais atlikušais hlors.
Izmantojot O-tolidīna vizuālo kolorimetrisko metodi, lai noteiktu, ja atlikušais hlors ir liels, tiks ražota oranžā dzeltenā krāsā; Ja ūdens parauga sārmainība ir pārāk augsta un atlikušais hlors ir mazs, tiks ražota gaiši zaļa vai gaiši zila krāsa. Šajā laikā var pievienot 1 ml O-tolidīna standarta šķīduma, lai iegūtu normālu gaiši dzeltenu krāsu.
71. Kādas ir atšķirības starp bioplēves metodes bioloģisko fāzi un aktivizētajām dūņām?
Biofilmu apstrādes sistēmas bioloģiskās fāzes raksturlielumi atšķiras no aktivizēto dūņu procesa, galvenokārt mikrobu sugu un sadalījuma izteiksmē.
Vispārīgi runājot, pateicoties pakāpeniskām ūdens kvalitātes izmaiņām un vides apstākļu uzlabošanai mikrobu augšanai, mikroorganismu veidi un daudzums bioplēves sistēmā ir vairāk nekā aktivizēto dūņu procesā, un pārtikas ķēde ir gara un sarežģītāka, it īpaši palielinājums, kas paredzēts arī dibenu sfergi, protozooa un degazāniem, un ir arī noteikts proporcijas proporcija. Aļģes var parādīties vietās, kas pakļautas saules gaismai, un var parādīties arī tādi kukaiņi kā filtru mušas. Sadalījuma raksturlielumi ir tādi, ka gar bioplēves biezumu (no virsmas līdz iekšpusei) vai ietekmes virzienā (atšķirīgs kontakta laiks ar ietekmi), mikroorganismu veidi un daudzumi parāda lielas atšķirības. Daudzpakāpju apstrādes pirmajā posmā vai lejupejošās plūsmas pildvielas augšējā daļā bioplēvē bieži dominē flokuliskas baktērijas, un plēves biezums ir arī salīdzinoši liels (2-3 mm); Palielinoties posmu skaitam vai lejupejošās plūsmas pildvielas slānim apakšējā daļā, jo ūdens kvalitāte, ar kuru tas kontaktējas, ir daļēji apstrādāts, bioplēvē pakāpeniski parādīsies pavedienīgākas baktērijas, vienšūņi un metazona; Mikroorganismu veidi palielinās, bet bioplēves biezums pastāvīgi samazinās (1-2 mm). Mikroorganismi uz bioplēves virsmas ir aerobi, un, palielinoties biezumam, mikroorganismi pakāpeniski kļūst fakultatīvi vai pat anaerobi.
Bioplēve ir fiksēta uz filtra materiāla vai pildvielas, un bioloģiskā cietā aiztures laiks SRT (dūņu vecums) ir garš, tāpēc tas var audzēt mikroorganismus ar ilgstošu paaudzes laiku un ļoti zemu proliferācijas ātrumu, piemēram, nitrificējošām baktērijām. Uz bioplēves var parādīties arī liels skaits pavedienu baktēriju, bet dūņu buļošana nenotiks. Salīdzinot ar aktivizēto dūņu metodi, dzīvnieku uztura īpatsvars organismos bioplēvē ir lielāks, arī mikrolanimālu izdzīvošanas ātrums ir augstāks, un tā var apdzīvot augsta līmeņa organismus. Oligochetes un kukaiņi apdzīvo virs plēsonīgiem ciliātiem, rotiferiem un nematodēm. Tāpēc bioplēves barības ķēde ir garāka par barības ķēdi aktivētajās dūņās, tāpēc bioplēves metodes radītais dūņu daudzums ir mazāks nekā aktivizēto dūņu metodei.
Raksturīgie mikroorganismi katrā līmenī vai katrā pildvielas slānī būs atšķirīgi atšķirīgās notekūdeņu kvalitātes dēļ, tas ir, izmaiņas ūdens kvalitātē izraisīs izmaiņas mikroorganismu veidos un skaitā bioplēvē. Kad ietekmē koncentrācija palielinās, var novērot, ka sākotnējā līmeņa raksturīgie mikroorganismi virzās uz leju, tas ir, mikroorganismi, kas sākotnēji uz priekšējā līmeņa vai augšējā pildījuma slāni var parādīties aizmugurējā līmenī vai apakšējā pildvielas slānī. Tāpēc līdzīgas izmaiņas var novērot, novērojot bioloģisko fāžu, lai secinātu notekūdeņu koncentrācijas vai dūņu slodzes izmaiņas.
72. Kāda ir kopējā baktēriju skaita indikatora nozīme ūdenī?
Kopējais baktēriju skaits attiecas uz koloniju skaitu, kas audzēta 1 ml ūdens parauga barības vielu barotnē pēc kultivēšanas 37oC 24 stundas. Mērīšanas vienība parasti ir kopējais baktēriju skaits, kas atrodas katrā ūdens ml. Kopējais baktēriju skaits ūdenī bieži ir saistīts ar organiskā piesārņojuma pakāpi ūdens ķermenī, un tas ir viens no svarīgākajiem rādītājiem ūdens piesārņojuma pakāpes un iespējamā kaitējuma novērtēšanai cilvēka ķermenim.
Kopējā baktēriju skaita analīzes metode izmanto standarta plāksnes metodi, lai skaitītu baktērijas ūdens paraugā, kas ir metode, lai noteiktu aerobās un fakultatīvās anaerobās heterotrofisko baktēriju blīvumu ūdenī. Tomēr, tā kā neviena barības vielu bāze vai vides stāvoklis nevar izpildīt visu baktēriju fizioloģiskās prasības ūdens paraugā un baktērijas ūdenī var pastāvēt atsevišķu indivīdu, pāru, ķēžu, kopu vai kopu veidā, izmērītais koloniju skaits faktiski ir mazāks nekā baktēriju skaits, kas faktiski izdzīvo pārbaudītajā ūdens paraugā.
73. Kādi ir piesardzības pasākumi, lai noteiktu kopējo baktēriju skaitu?
Izmantojiet aseptisko operācijas metodi, lai absorbētu 1 ml ūdens parauga vai no 2 līdz 3 atšķaidītiem ūdens paraugiem ar atbilstošiem atšķaidīšanas reizinājumiem, ievadiet tos sterilizētā plāksnē, pēc tam ielejiet 15 ml barības vielu agara barotnes un rūpīgi sajauciet ar ūdens paraugu, izgatavojiet divus paralēlus paraugus katram ūdens paraugam un papildus tam ir jāizdara tukša kontrole tikai barības vielu agarai.
Pēc kultūras plākšņu koloniju skaits jāveic nekavējoties. Ja skaits ir jāatliek, plāksni var uzglabāt vidē 5-10 ° C, bet ne ilgāk par 24 stundām, un šo praksi nevajadzētu izmantot kā ikdienas darbības metodi.
Skaitot plākšņu kolonijas, jūs varat novērot ar neapbruņotu aci. Lai novērstu izlaidumus, izmantojiet palielināmo stiklu, lai pārbaudītu, vai vajadzības gadījumā. Tām kolonijām, kas izskatās līdzīgas un ir tuvas viena otrai, bet nepieskaras, ja vien attālums ir mazāks par mazākās kolonijas diametru, tās būtu jāsaskaita atsevišķi. Tās kolonijas, kas atrodas ciešā kontaktā, bet kurām ir atšķirīgas parādīšanās (morfoloģija vai krāsa), arī jāsaskaita atsevišķi.
Aprēķinot vidējo koloniju skaitu no vienas un tās pašas atšķaidīšanas, ja vienai no plāksnēm aug lielas pārslu kolonijas, to nevajadzētu izmantot, un plāksnei bez pārslu kolonijām jāizmanto kā atšķaidīšanas koloniju skaits. Ja pārslu kolonijas ir mazāka par pusi no plāksnes un atlikušo koloniju sadalījums ir ļoti vienāds, koloniju skaitu 1/2 plāksnes ar vienmērīgu augšanu var reizināt ar 2, lai attēlotu visas plāksnes koloniju skaitu.
Kopējā baktēriju skaita rezultāts ir kopējais koloniju skaits katrā plāksnē vai vidējais koloniju skaits vienas un tās pašas atšķaidīšanas paralēlās eksperimentālajās plāksnēs, kas reizinātas ar atšķaidīšanas vairāku. Kad gala rezultāts ir 100 robežās, rezultāts tiek reģistrēts atbilstoši faktiskajam koloniju skaitam; Ja tas ir lielāks par 100, tiek izmantoti divi nozīmīgi skaitļi un izteikti kā eksponents 10. Ja koloniju skaitu nevar saskaitīt, ziņojot par rezultātu, jāatzīmē atšķaidīšanas vairākkārtējs.
74. Kā aprēķināt kopējo baktēriju skaitu ūdens paraugā, pamatojoties uz koloniju skaita rezultātu?
Aprēķinot baktēriju kopējā skaita testa rezultātus, ir jāsalīdzina un jāaprēķina, pamatojoties uz vidējo koloniju skaitu dažādos atšķaidījumos. Metode ir šāda:
⑴ Vispirms atlasiet gadījumu, kad aprēķinam vidējais koloniju skaits ir no 30 līdz 300. Ja vidējais koloniju skaits tikai vienā atšķaidījumā atbilst šajā diapazonā, vidējais koloniju skaits, kas reizināts ar to atšķaidīšanas vairākām, tiek izmantots kopējā baktēriju skaita rezultātā ūdens paraugā.
⑵ Ja vidējais koloniju skaits divos atšķaidījumos ir no 30 līdz 300, aprēķināšanas metode jānosaka atbilstoši abu attiecībai. Ja attiecība ir mazāka par 2, vidējā koloniju skaita vidējais rādītājs, kas reizināts ar atšķaidīšanas vairākām, izmanto ūdens parauga kopējā baktēriju skaita rezultātā; Ja attiecība ir lielāka par 2, mazāks no vidējā koloniju skaita, kas reizināts ar tā atšķaidījumu, vairākkārtējs izmanto kopējā ūdens parauga baktēriju skaita rezultātā.
⑶Ja visu atšķaidījumu vidējais koloniju skaits ir lielāks par 300, lielākā atšķaidīšanas vairāku cilvēku vidējo koloniju skaitu, kas reizināts ar tā atšķaidīšanas daudzkārtējiem, izmanto ūdens parauga kopējā baktēriju skaita rezultātā.
⑷Ja visu atšķaidījumu vidējais koloniju skaits ir mazāks par 30, mazākā atšķaidīšanas vairāku vidējo koloniju skaitu, kas reizināts ar tā atšķaidīšanas vairākām, izmanto ūdens parauga kopējā baktēriju skaita rezultātā.
⑸Ja visu atšķaidījumu vidējais koloniju skaits nav no 30 līdz 300, vidējais koloniju skaits, kas ir vistuvāk 30 vai 300, reizināts ar tā atšķaidīšanu vairākkārt, izmanto ūdens parauga kopējā baktēriju skaita rezultātā.
75. Kāda ir koliformu skaita nozīme (vērtība)?
Koliformas baktērijas attiecas uz aerobo vai fakultatīvo anaerobo, laktozes raudzēšanas, gramnegatīvo, bez sporu stieņu klasi, tāpēc tos dažreiz sauc arī par fekāliju koliformiem vai Escherichia coli. Koliformas baktērijas var radīt skābi un gāzi pēc kultivēšanas laktozes barotnē 37 ° C 24 stundas. Koliformas baktēriju skaitu (vērtību) parasti mēra ar koliformu baktēriju skaitu, kas atrodas 1L vai 100 ml ūdens.
Ja ūdens avots ir piesārņots ar fekālijām, to var piesārņot zarnu patogēni un izraisīt zarnu infekcijas slimības. Tā kā zarnu patogēni veido salīdzinoši nelielu mikroorganismu skaita daļu, bieži ir ļoti grūti atdalīt patogēnus no ūdens, īpaši krāna ūdeni. Koliformas baktērijas ir visizplatītākais un lielākais baktēriju veids zarnu aerobās baktērijās, tāpēc tos bieži izmanto kā indikatora baktērijas fekāliju piesārņojumam. Tas ir, koliformu baktēriju skaits ūdenī tiek izmantots, lai spriestu par to, vai ūdens avots ir piesārņots ar fekālijām, un tiek atklāta iespēja secināt, ka ūdens avots ir piesārņots ar zarnu patogēniem.
76. Kādas ir koliformu baktēriju skaita noteikšanas metodes?
Kopējo koliformu baktēriju noteikšanai ir divas parasti izmantotas metodes: daudzuļu fermentācijas metode un membrānas filtra metode.
Daudzuļu fermentācijas metode ir balstīta uz koliformu baktēriju īpašībām, piemēram, laktozes fermentāciju, gramnegatīvu krāsošanu, bez sporām un stieņa formas. To pārbauda trīs posmos, lai noteiktu kopējo koliformu baktēriju skaitu ūdens paraugā. Daudzuļu fermentācijas metodē ir visticamākais skaitlis, lai izteiktu eksperimentālos rezultātus, kas pazīstami arī kā MPN. Tā faktiski ir metode E. coli blīvuma un sanitārās kvalitātes novērtēšanai ūdenstilpēs, pamatojoties uz statistisko teoriju. Šis aprēķins parasti ir lielāks par faktisko skaitli. Aptuveno koliformas skaita vērtību nosaka atšķaidīšana, kas parāda gan pozitīvos, gan negatīvos rezultātus. Izstrādājot atkārtojumu skaitu, kas nepieciešami ūdens parauga pārbaudei, tam jābalstās uz nepieciešamo datu precizitāti.
Membrānas filtra metodē ūdens parauga filtrēšanai tiek izmantota īpaša sterilizēta mikropora membrāna. Pēc tam, kad baktērijas ir ieslodzītas uz membrānas, membrāna tiek piestiprināta pie fuksīna nātrija sulfīta barotnes kultūrai. Tā kā koliformas baktērijas var raudzēt laktozi, pēc filtra membrānas kultivēšanas parādīsies purpursarkanas sarkanās kolonijas ar metālisku spīdumu. Skaitot koloniju skaitu ar šo raksturlielumu filtra membrānā, var aprēķināt koliformu baktēriju skaitu, kas atrodas katrā ūdens parauga litrā. Filtra membrānas metode var izmērīt lielāku ūdens paraugu tilpumu un rezultātus var iegūt ātrāk nekā daudzuļu fermentācijas metode, bet efekts ir slikts, ja duļķainība ir augsta un nav E blīvums. coli baktērijas ir augstas.
77. Kas ir atlikušais hlors?
Atlikušais hlors ir hlors, kas paliek ūdenī pēc tam, kad ūdens tiek dezinficēts ar hloru noteiktu laiku. Tās funkcija ir saglabāt nepārtrauktas baktericīdas spējas. No brīža, kad ūdens nonāk cauruļu tīklā līdz ūdens punktam, jāuztur dezinfekcijas līdzekļu ietekme ūdenī, lai novērstu iespējamos patogēna bojājumus un atkārtotu izaugsmi. Tas prasa, lai ūdenim pievienotā dezinfekcijas līdzekļa daudzums ne tikai apmierinātu patogēnu nogalināšanas vajadzības ūdenī, bet arī saglabāt noteiktu atlikumu daudzumu, lai novērstu patogēnu atkārtotu izaugsmi ūdens transporta procesā. Ja tiek izmantota hlora dezinfekcija, tad dezinfekcijas līdzekļa daļa, kas tajā laikā pārsniedz dezinfekcijas vajadzības, ir atlikušais hlors.
Atlikušajam hloram ir divas formas: brīvais atlikušais hlors (CL2, HOCL un OCL-) un kombinēts atlikušais hlors (NH2CL, NHCL2 un NCL3). Šīs divas formas var pastāvēt vienā un tajā pašā ūdens paraugā vienlaikus, un abu summu sauc par kopējo atlikušo hloru. Bezmaksas atlikušajam hloram ir spēcīga baktericīda spēja, bet to ir viegli sadalīt. Kombinētajam atlikušajam hloram ir vāja baktericīda spēja, bet ilgāk ilgāk ūdenī. Parasti, ja ūdenī nav amonjaka vai amonija, atlikušais hlors ir brīvs atlikušais hlors, savukārt, kad ūdenī ir amonjaks vai amonijs, atlikušais hlors parasti satur tikai kombinētu hlora atlikumu un dažreiz atlikušo hloru un kombinēto hlora līdzāspastāvēšanu. Atlikušā hlora daudzumam jābūt piemērotam. Pārāk zemam nebūs nozīmes patogēnu novēršanā un ārstēšanā. Pārāk augsts ne tikai palielinās dezinfekcijas izmaksas, bet arī var nodarīt kaitējumu cilvēka ķermenim, ja tas atrodas saskarē ar cilvēka ķermeni.
Konceptuāli atlikušais hlors attiecas uz hlora gāzes un hlora sēriju dezinfekcijas līdzekļiem. Izmantojot citus hlora dezinfekcijas līdzekļus, piemēram, hlora dioksīdu, atlikušais hlors jāsaprot kā atlikušais dezinfekcijas līdzeklis, kas atstāts ūdenī pēc noteikta saskares perioda.
78. Kādas ir metodes atlikušā hlora noteikšanai? Kādi ir viņu attiecīgie piemērojamie apjomi?
Atlikušā hlora noteikšanu var veikt ar joda titrēšanu, O-tolidīna vizuālo kolorimetriju, n, n-dietil-P-fenilēndiamīnu (DPD) Dziesmā titrēšanu (GB 11897-89), N, n-dietil-p-phenilēndiamīna spektrofotometrijas (GB 11898-89). hlora atlikušais ūdens paraugā; O-tolidīna vizuālās kolorimetrijas metode var noteikt kopējo atlikušo hloru un brīvo atlikušo hloru, mainot darbības procedūru; N, N-dietil-P-fenilēndiamīna titrēšanas metode vai spektrofotometrijas metode var noteikt brīvo hloru vai kopējo hloru koncentrācijas diapazonā 0,03-5 mg/L, un, mainot darbības procedūru, var noteikt arī monohloramīnu, dihloramīnu un dažus kombinētus hlorīna komponentus var noteikt attiecīgi.
Joda titrēšanas metode ir piemērota ūdens paraugiem ar kopējo atlikušā hlora saturu, kas lielāks par 1 mg/L, un tā ir parasti izmantota metode pievienotā hlora daudzuma noteikšanai. O-tolidīna vizuālo kolorimetrisko metodi ir vienkārši darbināma, un tā ir izplatīta metode, lai noteiktu atlikušo hloru dzeramajā ūdenī. Mērījumu diapazons ir 0,01-10 mg/L. N, N-dietil-P-fenilēndiamīna titrēšanas metodei vai spektrofotometrijas metodei ir augsta jutība, un tā var noteikt ūdens paraugus ar zemu atlikušo hlora saturu. Tas ir piemērots, lai noteiktu kopējo pieejamo hloru notekūdeņos, kas satur organiskās vielas. Abu metožu mērījumu diapazoni ir attiecīgi 0,05–1,5 mg/L un 0,03–5 mg/L.
